Alcea Rosea Çiçekleri Etanol Özütü İn Vitro Koşullarda Adipogenez Üzerine Baskılayıcı Etkiye Sahiptir
DOI:
https://doi.org/10.5281/zenodo.14569158Anahtar Kelimeler:
Adipogenez, Alcea rosea, ObeziteÖzet
Amaç: Obezite, ciddi sağlık komplikasyonlarına neden olan ve tüm dünyada görülen bir hastalıktır ve yeni, uzun vadeli ve etkili alternatif obezite karşıtı stratejiler geliştirme ihtiyacı vardır. Doğal ve bitkisel ürünler, anti-inflamatuar, antioksidan ve obezite karşıtı etkiler de dahil olmak üzere çeşitli biyolojik aktiviteleri nedeniyle obeziteyi tedavi etmede yaygın olarak kullanılmaktadır. Bu çalışmada, Alcea rosea çiçeğinin lipid birikimi ve adipogenezde önemli bir rol oynayan PPARγ ve CERBβ biyobelirteçleri üzerindeki etkilerini araştırmak amaçlanmıştır.
Materyal ve Metot: Adipogenezi in vitro ortamda mimiklemek için insan öncül adiposit hücreleri kullanıldı ve 37°C' de %5 CO2 inkübatöründe bir preadiposit büyüme besiyerinde büyütüldü. Büyüyen hücreler 105 hücre/kuyu olacak şekilde ekildi, ardından 4 gruba ayrıldı ve her gruba farklı dozlarda (50 μg 100 μg 150 μg ve 200 μg) Alcea rosea etanol özütü (ARE) ve farklılaşma besiyeri uygulandı. 15. günün sonunda, lipid birikimini ölçmek için Oil O Red boyama yapıldı. PPARγ ve C/EBPβ gen ifadeleri RT-PCR yöntemi ile belirlendi.
Bulgular: Lipid birikiminin tüm ARE dozlarında önemli ölçüde (p<0,05) baskılandığı belirlendi. Ayrıca, ARE tüm dozlarda PPARγ gen ekspresyonunu baskıladı, ancak baskılama yalnızca 100 μg uygulanan seviyede istatistiksel olarak anlamlı bulundu (p=0,05). C/EBPβ geninin analizinde, baskılanma tüm dozlarda gözlemlendi, ancak baskılanma yalnızca 50 μg (p=0,04) ve 100 μg (p=0,04) dozlarında istatistiksel olarak anlamlı olarak bulundu.
Tartışma ve Sonuç: Sonuç olarak uygulanan ARE konsantrasyonlarının yağ oluşumunu baskıladığı ve obezite karşıtı özelliklere sahip olduğu tespit edilmiş olup, ancak çalışma bulgularının daha ileri çalışmalarla desteklenmesi önerilmektedir.
Referanslar
Guilherme A, Virbasius JV, Puri V, Czech MP. Adipocyte dysfunctions linking obesity to insulin resistance and type 2 diabetes. Nat Rev Mol Cell Biol. 2008;9(5):367-77.
Janani C, Ranjitha Kumari BD. PPAR gamma gene--a review. Diabetes Metab Syndr. 2015;9(1):46-50.
Guo L, Li X, Tang QQ. Transcriptional regulation of adipocyte differentiation: a central role for CCAAT/enhancer-binding protein (C/EBP) β. J Biol Chem. 2015;290(2):755-61.
Mert T, Fafal T, Kıvcak B, and Ozturk HT. Antimicrobial and cytotoxic activities of the extracts obtained from the flowers of Alcea Rosea L. Hacettepe University Journal of the Faculty of Pharmacy. 2010;30(1):17-24.
El Ghaoui WB, Ghanem EB, Chedid LA, Abdelnoor AM. The effects of Alcea rosea L., Malva sylvestris L., and Salvia libanotica L. water extracts on the production of anti-egg albumin antibodies, interleukin-4, gamma interferon and interleukin-12 in BALB/c mice. Phytother Res. 2008;22(12):1599-604.
Zhang Y, Jin L, Chen Q, Wu Z, Dong Y, Han L, etal. Hypoglycemic activity evaluation and chemical study on hollyhock flowers. Fitoterapia. 2015;102:7-14.
Shahabipour F, Caraglia M, Majeed M, Derosa G, Maffioli P, Sahebkar A. Naturally occurring anti-cancer agents targeting EZH2. Cancer Lett. 2017;400:325-335.
Choi ES, Cho SD, Shin JA, Kwon KH, Cho NP, Shim JH. Althaea rosea Cavanil and Plantago major L. suppress neoplastic cell transformation through the inhibition of epidermal growth factor receptor kinase. Mol Med Rep. 2012;6(4):843-7.
You JS, Lee YJ, Kim KS, Kim SH, Chang KJ. Anti-obesity and hypolipidaemic effects of Nelumbo nucifera seed ethanol extract in human pre-adipocytes and rats fed a high-fat diet. J Sci Food Agric. 2014;94(3):568-75.
Swamy GM, Meriga B. Therapeutic effect of Moringa oleifera leaf extracts on oxidative stress and key metabolic enzymes related to obesity. International Journal of Pharmaceutical Sciences and Research. 2020;11(4):1949-1957.
Torres-Villarreal D, Camacho A, Castro H, Ortiz-Lopez R, de la Garza AL. Anti-obesity effects of kaempferol by inhibiting adipogenesis and increasing lipolysis in 3T3-L1 cells. J Physiol Biochem. 2019;75(1):83-88.
Zhou J, Yoshitomi H, Liu T, Zhou B, Sun W, Qin L, et.al. Isoquercitrin activates the AMP-activated protein kinase (AMPK) signal pathway in rat H4IIE cells. BMC Complement Altern Med. 2014;14:42.
Lee SH, Kim B, Oh MJ, Yoon J, Kim HY, Lee KJ, et.al. Persicaria hydropiper (L.) spach and its flavonoid components, isoquercitrin, and isorhamnetin, activate the Wnt/β-catenin pathway and inhibit adipocyte differentiation of 3T3-L1 cells. Phytother Res. 2011;25(11):1629-35.
Dudek M, Matławska I, Szkudlarek M. Phenolic acids in the flowers of Althaea rosea var. nigra. Acta Pol Pharm. 2006;63(3):207-11.
Hsu CL, Yen GC. Effects of flavonoids and phenolic acids on the inhibition of adipogenesis in 3T3-L1 adipocytes. J Agric Food Chem. 2007;55(21):8404-10.
Seo CH, Yi B, Oh S, Kwon SM, Kim S, Song NJ, et.al. Aqueous extracts of hulled barley containing coumaric acid and ferulic acid inhibit adipogenesis in vitro and obesity in vivo. Journal of Functional Foods. 2015;12: 208-218.
Park J, Cho SY, Kang J, Park WY, Lee S, Jung Y, et.al. Vanillic Acid Improves Comorbidity of Cancer and Obesity through STAT3 Regulation in High-Fat-Diet-Induced Obese and B16BL6 Melanoma-Injected Mice. Biomolecules. 2020;10(8):1098.
Wang Q, Wang ST, Yang X, You PP, Zhang W. Myricetin suppresses differentiation of 3T3-L1 preadipocytes and enhances lipolysis in adipocytes. Nutr Res. 2015;35(4):317-27.
Park HS, Kim SH, Kim YS, Ryu SY, Hwang JT, Yang HJ, et.al. Luteolin inhibits adipogenic differentiation by regulating PPARgamma activation. Biofactors. 2009;35(4):373-9.
Oh JH, Karadeniz F, Lee JI, Seo Y, Jang MS, Kong CS. Effect and comparison of luteolin and its derivative sodium luteolin-4′-sulfonate on adipogenic differentiation of human bone marrow-derived mesenchymal stem cells through AMPK-mediated PPARγ signaling. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine. 2020;1-8.
Park M, Sharma A, Lee HJ. Anti-Adipogenic Effects of Delphinidin-3-O-β-Glucoside in 3T3-L1 Preadipocytes and Primary White Adipocytes. Molecules. 2019;24(10):1848.
Ahn J, Lee H, Kim S, Park J, Ha T. The anti-obesity effect of quercetin is mediated by the AMPK and MAPK signaling pathways. Biochem Biophys Res Commun. 2008;373(4):545-9.
Park UH, Jeong JC, Jang JS, Sung MR, Youn H, Lee SJ, et.al. Negative regulation of adipogenesis by kaempferol, a component of Rhizoma Polygonati falcatum in 3T3-L1 cells. Biol Pharm Bull. 2012;35(9):1525-33.
İndir
Yayınlanmış
Nasıl Atıf Yapılır
Sayı
Bölüm
Lisans
Telif Hakkı (c) 2024 MEHES JOURNAL
Bu çalışma Creative Commons Attribution 4.0 International License ile lisanslanmıştır.